Actualización de aspectos claves para la epidemiología del amarillamiento letal del cocotero en Cuba

Autores/as

Palabras clave:

epidemiología, amarillamiento letal del cocotero, fitoplasmas, vectores, hospedantes alternativos

Resumen

Introducción: El amarillamiento letal del cocotero constituye uno de los principales retos en la región del Caribe.

Objetivos: Caracterizar la diversidad de los fitoplasmas asociados a la sintomatología del amarillamiento letal detectada en ecosistemas cocoteros cubanos; caracterizar los fitoplasmas asociados a amarillamiento letal presentes en hospedantes alternativos y en insectos vectores potenciales; c) comprobar la transmisión de fitoplasmas asociados a amarillamiento letal por los vectores potenciales identificados.

Métodos: Se caracterizó los fitoplasmas asociados a la enfermedad en cocoteros cubanos, así como en hospedante alternativo e insecto vector potencial a través análisis PCR- RFLP, secuenciación y filogenia. Se realizaron ensayos de transmisión experimental mediante insectos adultos de Haplaxius crudus colectados en plantaciones con cocoteros sintomáticos a la enfermedad.

Resultados: El subgrupo 16SrIV-A resultó predominante en las plantas sintomáticas de cocotero. Sin embargo, también se detectaron por primera vez fitoplasmas de los grupos ribosomales 16SrI, -VII y –XII en cocoteros dentro de las áreas afectadas. El empleo del gen groEL, posibilitó por primera vez discriminar diferentes aislados en las poblaciones cubanas del subgrupo 16SrIV-A acorde a su origen geográfico. La detección y caracterización de fitoplasmas infectando Pritchardia pacifica y Hortensia similis evidenció por primera vez un hospedante alternativo y un vector potencial de aislados de Candidatus Phytoplasma palmae en Cuba, respectivamente. Se confirmó H. crudus como vector de aislados de Ca. P. palmae mediante transmisión experimental exitosa.

Conclusiones: Estos nuevos aspectos epidemiológicos resaltan la complejidad del patosistema en las condiciones cubanas y son fundamentales para el perfeccionamiento del manejo de la misma.

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Citas

1. Prades A, SalumUN, Pioch D. New era for the coconut sector: What prospects for research? OCL. 2016; 23(6): D607. Disponible en: http://doi.org/10.1051/ocl/2016048

2. Cueto JR. Apuntes para una historia del cultivo del cocotero en Cuba I. Desde 1942 hasta 1959. Especial referencia a la región de Baracoa. Monografiado. 1986:15.

3. Gurr GM, Johnson AC, Ash GJ et al. Coconut lethal yellowing diseases: a phytoplasmas threat to palms of global economic and social significance. Fronti Plant Sci. 2016;7:1521. Disponible en: http://doi.org/10.3389/fpls.2016.01521

4. Llauger R, Becker D, Cueto J, Peralta E, González V, Rodríguez M, et al. Detection and molecular characterization of phytoplasma associated with lethal yellowing disease of coconut palms in Cuba. Journal of Phytopathology. 2002;150:390-5. Disponible en: http://doi.org/10.1046/j.1439- 0434.2002.00758.x

5. Harrison NA, Helmick EE, Elliott ML. Lethal yellowing-type diseases of palms associated with phytoplasmas newly identified in Florida, USA. Ann ApplBiol. 2008;153:85-94. Disponible en: http://doi.org/10.1111/j.1744- 7348.2008.00240.x

6. Harrison NA, Davis RE, Oropeza C, Helmick E, Narvaez M, Eden-Green S, et al. ‘Candidatus Phytoplasma palmicola’ a novel taxon associated with a lethal yellowing type disease (LYD) of coconut (Cocos nucifera L.) in Mozambique. International Journal of Systematic and Eolutionary Microbiology. 2014;64:1890-9. Disponible en: http://doi.org/10.1099/ijs.0.060053-0

7. Howard FW, Moore D, Gibling-Davis RM, Abad RG. The animal class Insecta and the plant family Palmae. In: Insects on Palms. CABI, USA; 2001:1-32p.

8. Howard FW, Norris RC, Thomas DL. Evidence of transmission of palm lethal yellowing agent by a planthopper, Myndus crudus (homoptera: Cixiidae). Trop Agric. 1983;60:168-71.

9. Rajan P. Transmission of coconut root (wilt) disease through plant hopper, Proutista moesta Westwood (Homoptera: Derbidae). Pest manage Hortic. Ecosyst. 2013;17:1-5.

10. Llauger R, Alonso M, Fabre S, Gonzalez C, Julia JF, Luis M, et al. Current status of coconut lethal yellowing research in Cuba. XLVI Annual Meeting American Phytopathological Society, Cartagena, Colombia. September 12-16 (internet). 2006. Disponible en: https://agritrop.cirad.fr/539077/

11. Tomlinson JA, Boonham N, Dickinson M. Development and evaluation of a one-hour DNA extraction and loop-mediated isothermal amplification assay for rapid detection of phytoplasmas. Plant Pathology. 2010;59(3):456-71. Disponible en: http://doi.org/10.1111/j.1365-3059.2009.02233.x

12. Murray MG,Thompson WF. Rapid isolation of high molecular weight plant DNA. Nucleic Acids Research. 1980;8:4321-5. Disponible en: http://doi.org/10.1093/nar/8.19.4321

13. Prince JP, Davis RE, Wolf TK, Lee I-M, Mogen BD, Dally EL, et al. Molecular detection of diverse mycoplasma-like organisms (MLOs) associated with grapevine yellows and their classification with aster yellows, X-disease, and elm yellows MLOs. Phytopathology. 1993;83:1130-7.

14. Deng S, Hiruki C. Amplification of 16S rRNA genes from culturable and non culturable Mollicutes. Journal Microbiology Methods. 1991;14:53-61. Disponible en: http://doi.org/1016/0167-7012(91)90007-D

15. Schneider B, Seemuller E, Smart CD, Kirkpatrick BC. Phylogenetic classification of plant pathogenic mycoplasma like organisms or phytoplasmas. In: Molecular and Diagnostic Procedures in Mycoplasmology. Academic Press, USA; 1995:369-80 p. Disponible en: http://doi.org/10.1016/b978-012583805-5/50040-6

16. Lorenz KH, Schneider B, Ahrens U, Seemuller E. Detection of the apple proliferation and pear decline phytoplasmas by PCR amplification of ribosomal and non-ribosomal DNA. Phytopathology. 1995;85:771-6.

17. Gundersen DE, Lee I-M. Ultrasensitive detection of phytoplasmas by nested- PCR assays using two universal primer pairs. Fitopathologia Mediterranea. 1996;35:144-51.

18. Harrison N, Cordova I, Richardson P, Dibonito R. Detection and diagnosis of lethal yellowing. In: Current Advances in Coconut Biotechnology. Kluwer Academic, The Netherlands; 1999:183-96 p. Disponible en: http://doi.org/10.1007/978-94-015-9283-3_13

19. Harrison NA, Womack M, Carpio ML. Detection and characterization of a lethal yellowing (16SrIV) group phytoplasmas in Canary Island date palms affected by lethal decline in Texas. Plant Dis. 2002b;86(6):676-81. Disponible en: http://doi.org/10.1094/PDIS.2002.86.6.676

20. Harrison NA, Narváez M, Almeyda H et al. First report of group 16SrIV phytoplasmas infecting coconut palms with leaf yellowing symptoms on the pacific coast of Mexico. New Dis Rep. 2002c;5:1-3. Disponible en: http://doi.org/10.1046/j.1365-3059.2002.00778.x

21. Myrie W, Harrison N, Douglas L et al. Identification of lethal yellowing disease of palms associated with infection by subgroup 16SrIV-A phytoplasmas in Antigua, West Indies. New Dis Rep. 2014;29:12. Disponible en: http://dx.doi.org/10.5197/j.2044-0588.2014.029.012

22. Zhao Y, Wei W, Lee I-M, Shao J, Suo X, Davis RE. Construction of an interactive online phytoplasmas classification tool iPhyClassifier, and its application in analysis of the peach X-disease phytoplasmas group (16SrIII). International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2009;59(10):2582-93. Disponible en: http://doi.org/10.1099/ijs.0.010249-0

23. Wei W, Lee I-M, Davis RE, Suo X, Zhao Y. Automated RFLP pattern comparison and similarity coefficient calculation for rapid delineation of new and distinct phytoplasmas 16Sr subgroup lineages. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 2008: 58(10):2368-77. Disponible en: http://doi.org/10.1099/ijs.0.65868-0

24. Bertaccini A, Satta E, Luis-Pantoja M, Paredes-Tomás C, Uneau Y, Myrie W. Candidatus Phytoplasma and Candidatus Liberibacter species detection in Citrus. Phytopathogenic Mollicutes. 2019;9(1):187-8. Disponible en: http://doi.org/10.5958/2249-4677.2019.00094.X

25. Luis-Pantoja M, Paredes-Tomás C, Uneau Y, Myrie W, Morillon R, Satta E, et al. Identification of Candidatus Phytoplasma species in huanglongbing infected citrus orchards in the Caribbean. European Journal of Plant Pathology. 2021;160:185-98. Disponible en: http://doi.org/10.1007/s10658-021-02234-7

26. Paredes-Tomás C, Satta E, Paltrinieri S, Oropeza-Salin C, Myrie W, Bertaccini A, Luis Pantoja M. Candidatus Phytoplasma species detection in coconut in Cuba. Phytopathogenic Mollicutes. 2019;9(1):191-2. Disponible en: http://doi.org/10.5958/2249-4677.2019.00096.3

27. Kumar S, Stecher G, Li M, Knyaz C, Tanura K. MEGA X: Molecular evolutionary genetics analysis across computing platforms. Molecular Biology and Evolution. 2018;35(6):1547-9. Disponible en: http://doi.org/10.1093/molbev/msy096

28. Dlabola J, Novoa N. Dos especies del género Hadria Metcalf y Bruner, 1936 (Homoptera: Auchenorrhyncha) y revisión de otras especies cubanas. Instituto de Zoología, Academia de Ciencias de Cuba. 1976.

29. Ntushello K, Harrison NA, Elliot ML. Palm phytoplasmas in the Caribbean basin. Palms. 2013;57(2):93-100.

30. Contaldo N, D’Amico G, Paltrinieri S, Diallo HA, Bertacini A, Arocha Rosete Y. Molecular and biological characterization of phytoplasmas from coconut palms affected by the lethal yellowing disease in Africa. Microbiological Research. 2019;223-5:51-7. Disponible en: http://doi.org/10.1016/j.micres.2019.03.011

31. Johannesen J, Foissac X, Kehrli P, Maixner M. Impact of vector dispersal and host-plant fidelity on the dissemination of an emerging plant pathogen. Plos ONE. 2012;7:e51809.

32. Moreira-Carmona L, Villalobos-Muller W, Saborío-Rodriguez G, Garita-Salazar L, Castro-Robleda S, Romero-Cano J, Godoy-Cabrera C and Rivera- Herrero C. Avances en la investigación sobre un fitoplasma asociado al amachacamiento del frijol. In: Memoria Congreso Alianza Tecnológica para la agricultura con calidad; V Congreso Iberoamericano de Agroplasticultura; IV Congreso Nacional de Suelos y V Congreso Nacional de Fitopatología. Costa Rica. 2003:17-19 pp.

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Publicado

2025-10-06

Cómo citar

Paredes Tomás, C., Luis Pantoja, M., Bertaccini, A., Rodríguez Tapia, J. L., Oropeza Salín, C., Myrie, W., … Pacini, F. (2025). Actualización de aspectos claves para la epidemiología del amarillamiento letal del cocotero en Cuba. Anales De La Academia De Ciencias De Cuba, 15(3), e3162. Recuperado a partir de https://revistaccuba.sld.cu/index.php/revacc/article/view/3162

Número

Sección

Ciencias Agrarias y de la Pesca